RIP技術主要是運用針對目標蛋白的抗體把相應的RNA-蛋白復合物沉淀下來，經過分離純化就可以對結合在復合物上的RNA進行q-PCR驗證或者測序分析。RIP是研究細胞內RNA與蛋白結合情況的技術，是了解轉錄后調控網絡動態過程的有力工具，可以幫助我們發現miRNA的調節靶點。根據需求，金開瑞可以提供RNA/蛋白、RNA/RNA互作驗證RIP技術服務。
 

　　應用：
 

　　1.用抗體或表位標記物捕獲細胞核內或細胞質中內源性的RNA結合蛋白；
 

　　2.防止非特異性的RNA的結合；
 

　　3.免疫沉淀把RNA結合蛋白及其結合的RNA一起分離出來；
 

　　4.結合的RNA序列通過定量RT-PCR或高通量測序(RIP-Seq)方法來鑒定。
 

　　RIP實驗流程：
 

　　(一)細胞裂解液獲取
 

　　A.單層細胞或者貼壁細胞處理
 

　　1.冷PBS清洗培養皿或培養瓶中的細胞兩次
 

　　2.加入冷PBS后用細胞刮將細胞刮下來，收集至enpendoff管
 

　　3.1500rpm，4℃離心5min，棄上清，收集細胞
 

　　4.用與細胞等體積的RIP裂解液重懸細胞，吹打均勻后于冰上靜置5min
 

　　5.每管分裝200ul細胞裂解液，貯存于-80℃
 

　　B.懸浮細胞處理：先收集細胞再計數，然后清洗裂解
 

　　C.組織樣品處理
 

　　1.冷PBS清洗新鮮切下的組織三次
 

　　2.加入冷PBS后，用勻漿器或其他細胞分離設備使組織分散為單個細胞，計數
 

　　3.1500rpm，4℃離心5min，棄上清，收集細胞
 

　　4.用與細胞等體積的RIP裂解液重懸細胞，吹打均勻后置于冰上靜置5min
 

　　5.每管分裝200ul細胞裂解液，貯存于-80℃
 

　　(二)磁珠的準備
 

　　A.實驗前準備
 

　　1、enpendoff管
 

　　2、磁力架
 

　　3、冰盒，RIPWashBuffer置于冰上
 

　　4、抗體，置于冰上
 

　　5、渦旋震蕩器
 

　　6、槍、槍頭放于超凈臺照射30min，槍噴DEPC水
 

　　B.磁珠準備過程
 

　　1.重懸磁珠
 

　　2.標記實驗所需的enpendoff管，樣品包括目的樣品，陰性對照與陽性對照
 

　　3.吸取50ul重懸后的磁珠懸液于每個enpendoff管
 

　　4.每管加入500ulRIPWashBuffer，渦旋震蕩
 

　　5.將enpendoff管置于磁力架上，并左右轉動15°使磁珠吸附成一條直線，去上清，重復一次
 

　　6.用100ul的RIPWashBuffer重懸磁珠，加入約5ug相應抗體于每個樣品中
 

　　7.室溫孵育30min
 

　　8.將enpendoff管置于磁力架上，棄上清
 

　　9.加入500ulRIPWashBuffer，渦旋震蕩后棄上清，重復一次
 

　　10.加入500ulRIPWashBuffer，渦旋震蕩后置于冰上